Cryptosporidium

Cryptosporidium, insanlar da dâhil olmak üzere çok çeşitli omurgalı konakçıların gastrointestinal ve solunum yollarındaki epitel hücrelerini enfekte eden ve kriptosporidiyoza (akut bir ishal hastalığı) neden olan bir apikompleksan protozoan parazit cinsidir.[1][2] Parazitler zorunlu hücre içi (obligat intrasellüler) patojenlerdir, ancak benzersiz bir parazitofor vakuol içerisinde, sitoplazma dışında (ekstrasitoplazmik olarak) ikamet ederler. Yaşam döngülerini konakçı içinde eşeysiz ve eşeyli üreme yoluyla tamamlarlar ve bu süreç, dışkı ile atılan dayanıklı ookistlerin üretimiyle sonuçlanır.[3] Bulaşma, öncelikle kontamine su, yiyecek veya enfekte konakçılarla doğrudan temas yoluyla sporlanmış ookistlerin yutulmasıyla fekal-oral yoldan gerçekleşir. Ookistlerin klor ve diğer yaygın dezenfektanlara karşı gösterdiği olağanüstü direnç, arıtılmış rekreasyonel ve içme suyu sistemlerinde su kaynaklı salgınların oluşmasını kolaylaştırır.[3][4] İmmünokompetan (bağışıklık sistemi sağlıklı) bireylerde enfeksiyon tipik olarak 1-2 hafta süren kendi kendini sınırlayan sulu ishal, mide bulantısı ve karın ağrısı şeklinde kendini gösterir. Ancak HIV/AIDS’li hastalar gibi bağışıklığı baskılanmış kişilerde kronik biliyer ve bağırsak tutulumu nedeniyle ciddi, potansiyel olarak ölümcül riskler oluşturur.[5][6] İnsan vakalarında C. parvum ve C. hominis gibi türler baskındır; çiftlik hayvanlarından ve evcil hayvanlardan zoonotik bulaşma, halk sağlığı endişelerini artırmaktadır. Bu durum, filtrasyon ve dezenfeksiyon çabalarına rağmen yüzme havuzlarında, su parklarında ve belediye kaynaklarında tekrarlayan salgınlarla kanıtlanmaktadır.[2][7]

Taksonomi ve Sınıflandırma

Tanınmış Türler ve Konakçılar

Cryptosporidium cinsi, memeliler, kuşlar, sürüngenler, balıklar ve amfibiler dâhil olmak üzere geniş bir omurgalı konakçı yelpazesini enfekte eden, öncelikle 18S rRNA ve gp60 geni sekanslama gibi moleküler analizlerle doğrulanmış 40’tan fazla tanınmış türü kapsar.[8] Bu türler değişen konakçı özgüllüğü sergiler; birçoğu belirli konakçı gruplarına adapte olmuşken, diğerleri insanlar da dâhil olmak üzere türler arası bariyerleri aşarak bulaşmayı kolaylaştıran zoonotik kapasite gösterir.[9] İnsan enfeksiyonlarının %95’inden fazlasını C. parvum ve C. hominis oluştururken, daha nadir zoonotik türler sporadik vakalara katkıda bulunur.[10]

Konakçı adaptasyonu bulaşma dinamiklerini etkiler; C. hominis gibi antroponotik türler öncelikle insanlar arasında fekal-oral yollarla dolaşırken, C. parvum gibi zoonotik türler sığır gibi çiftlik hayvanlarında rezervuarlarını koruyarak çevresel kontaminasyonu ve türler arası yayılımı mümkün kılar.[2] Yaban hayatı ve evcil hayvanlar, parazitin ekolojik çeşitliliğini ve halk sağlığı üzerindeki etkilerini vurgulayan ek türler için rezervuar görevi görür.[9]

Türler Birincil Konakçılar Zoonotik Potansiyel
C. parvum Ruminantlar (ör. sığır), insanlar Yüksek
C. hominis İnsanlar Düşük (antroponotik)
C. muris Kemirgenler Nadir
C. andersoni Sığır (gastrik) Bildirilmemiş
C. felis Kediler Ara sıra
C. canis Köpekler Ara sıra
C. suis Domuzlar Düşük
C. meleagridis Kuşlar (ör. hindiler) Ara sıra
C. cuniculus Tavşanlar Evet
C. ubiquitum Ruminantlar, kemirgenler Yeni ortaya çıkan (Emerging)
C. scrofarum Domuzlar Bildirilmemiş
C. baileyi Kuşlar (ör. tavuklar) Bildirilmemiş

Bu tablo temsili türleri vurgulamaktadır; kapsamlı listeler 40 türü aşmaktadır ve devam eden moleküler keşifler taksonomiyi ve konakçı ilişkilerini geliştirmektedir.[9][8] C. rubeyi (sincaplar) ve C. huwi (balıklar) gibi türler, çiftlik hayvanlarına adapte olmuş parazitlerin zoonotik tehditlerinin aksine, insanla ilgisi olmayan konakçıya özgü formları örneklendirir.[9]

Taksonomik Tartışmalar ve Moleküler Filojeni

Cryptosporidium‘un geleneksel taksonomisi; ookist morfolojisine, konakçı özgüllüğüne ve yaşam döngüsü gözlemlerine dayanıyordu. Bu durum, ince morfolojik farklılıklar ve varsayılan kesin konakçı bariyerleri nedeniyle çeşitli izolatların başlangıçta C. parvum adı altında eş anlamlı (sinonim) olarak kabul edilmesine yol açtı.[11] Bu yaklaşım genetik heterojenliği göz ardı etti ve gözlemlenen varyasyonların gerçek türleri mi yoksa tür içi suşları mı temsil ettiği konusundaki tartışmaları tetikledi; eleştirmenler konakçı aralığı ve ookist boyutunun taksonları ayırmak için tek başına yetersiz olduğunu savundu.[11] 1990’lardan bu yana yapılan moleküler analizler, özellikle küçük alt birim ribozomal RNA (SSU rRNA) ve ısı şok proteini 70 (HSP70) genlerinin sekanslanması, kümeler arasında %3-5’i aşan dizi farklılıklarını ortaya koyarak farklı türlerin varlığını doğrulamıştır. Bu bulgular, daha önceki gruplandırmalara meydan okumuş ve genotipleri filogenetik kümelenme ve biyolojik ayırt ediciliğe dayalı olarak tür statüsüne yükseltmiştir.[12][11]

SSU rRNA genlerini kullanan filogenetik çalışmalar, Cryptosporidium‘u tutarlı bir şekilde iki ana dala (klad) ayırır: sırasıyla kemirgenleri ve sürüngenleri enfekte eden ve insan patojenlerinden daha derin bir ayrışma gösteren C. muris ve C. serpentis‘i içeren bir gastrik (mide) grubu; ve C. parvum, C. hominis, C. felis, C. meleagridis ve çeşitli konakçılardan ilgili genotipleri içeren, konakçı grupları içinde polifiletik kökenleri ve sık türler arası geçiş potansiyelini gösteren daha büyük bir bağırsak grubu.[12] HSP70 ve tüm genom sekanslamasından elde edilen tamamlayıcı veriler bu topolojiyi güçlendirmektedir. Sığır izolatları, “housekeeping” genlerinde %1-2’ye kadar farklılık göstermelerine rağmen zoonotik kapasiteyi paylaştığından, C. parvum genotipleri (örneğin; sığır, insan) kriptik türleşmeyi (cryptic speciation) düşündüren alt kümeler oluşturur.[12] Bu bulgular, sığır C. parvum genotipleri için önerilen ancak Uluslararası Zoolojik Adlandırma Kodu (ICZN) standartlarının gerektirdiği kapsamlı morfolojik ve deneysel konakçı verilerinden yoksun olan ve genetik desteğe rağmen bazı taksonomistlerce geçersiz sayılan tartışmalı C. pestis gibi türlerin geçerliliği üzerine tartışmaları alevlendirmiştir.

2021 yılı itibarıyla moleküler kanıtlar, omurgalılar genelinde en az 44 Cryptosporidium türünü ve 120’den fazla genotipi doğrulamıştır. Tür kriterleri artık SSU rRNA sekanslamasını (türdeşlik için >%95 benzerlik), ≥ 20 numuneden ookist morfometrisini, prepatent/patent süre dokümantasyonunu ve doğal konakçı enfektivite gösterimlerini zorunlu kılmaktadır.[13][11] Klinik örneklerden elde edilen filogenomik rekonstrüksiyonlar, kapsamlı intragenomik çeşitliliği ve rekombinasyonu ortaya koyarak sınırlandırmayı zorlaştırdığı, ancak geleneksel konakçı silolarının ötesinde adaptif yayılımı vurguladığı için tam karakterizasyonu bekleyen geçici genotipler (ör. servin, sincap) üzerindeki tartışmalar devam etmektedir.[13] Bu moleküler çerçeve, önceki belirsizlikleri çözmüş, C. andersoni (sığır) ve C. baileyi (kuşlar) gibi türleri konakçıya adapte olmuş gen repertuarları aracılığıyla farklı olarak doğrularken, yetersiz tanımlanmış taksonlardan kaynaklanan zoonotik riskleri vurgulamıştır.[11]

Morfoloji ve Biyoloji

Hücresel Yapı ve Ookist Özellikleri

Cryptosporidium, Apicomplexa şubesinde sınıflandırılan, kayma hareketi (gliding motility) ve konakçı hücre istilası için gerekli olan roptri, mikronem ve yoğun granülleri içeren polar bir apikal kompleks ile karakterize edilen zorunlu hücre içi bir protozoan parazittir.[2] Parazitin hücresel yapısı tek bir çekirdek, kristaloid cisim (sporozoitin bazal ucunda çok vesiküllü bir organel) ve istila sırasında parazitofor vakuol oluşturmak üzere içeriklerini boşaltan salgı organellerini içerir.[14] Tipik apikompleksanların aksine, Cryptosporidium, konakçı epitel hücresinin apikal plazma zarının hemen altında konumlanan sığ bir parazitofor vakuol işgal eder. Vakuol zarı, konakçı mikrovillar bileşenleri (aktin ve ezrin gibi) ile kaynaşmış ve bunları bünyesine katmıştır; bu da özelleşmiş bir besleyici organel aracılığıyla doğrudan besin alımını sağlar.[1][15]

Çevresel olarak bulaşan evre olan ookist; C. parvum ve C. hominis gibi insanı enfekte eden türler için 4.2–5.4 μm çapında, sağlam, küresel ila oval bir yapıdır ve araya giren bir sporokist olmaksızın dört adet muz şekilli sporozoit içerir.[2][16] Ookistler tamamen sporlanmış ve dışkı ile atıldıklarında hemen enfeksiyöz halde olup, harici sporülasyon gerektirmeden konakçı içinde hücre içi olarak olgunlaşırlar.[17] Ookist duvarı çok katmanlı bir bariyerden oluşur: dış glikokaliks, lipit açısından zengin bir hidrokarbon tabakası, iç elektron yoğun proteinöz matris ve ek alt tabakalar. Bu yapı klor, kuruma (desikasyon) ve mide asidine karşı direnç sağlayarak parazitin yüksek çevresel kalıcılığına katkıda bulunur.[18][19] Elektron mikroskobu ve proteomik analizlerle detaylandırılan bu duvar yapısı, sert bir iskele oluşturmak üzere çapraz bağlanan COWP’ler (Cryptosporidium ookist duvar proteinleri) gibi sistein açısından zengin proteinleri içerir.[20]

Genel Özellikler ve Adaptasyonlar

Cryptosporidium türleri, Apicomplexa şubesi içinde sınıflandırılan zorunlu hücre içi protozoan parazitlerdir. Öncelikle memeliler ve kuşlardan sürüngenler ve balıklara kadar uzanan omurgalıların gastrointestinal ve daha az yaygın olarak solunum yollarındaki epitel hücrelerinin apikal yüzeylerini enfekte ederler.[2][21] Bu parazitler, bulaşıcı ookist evresinde 2-6 mikrometre boyutundadır ve bir konakçı tarafından yutulduğunda eksistasyon (kist açılımı) yapabilen dört sporozoit içerir.[1] Birçok apikompleksanın aksine, Cryptosporidium sporülasyonu hücre dışında tamamlayarak çevrede hemen bulaşıcı olan ookistler üretir.[1]

Önemli bir adaptasyon, ookistin sağlam, çift katmanlı duvar yapısıdır. Bu yapı, glikoproteinlerden oluşan dış elektron yoğun bir tabaka ve tabakaları birbirine tutturan COWP8 gibi çoklu Cryptosporidium ookist duvar proteinleri (COWP’ler) ve sistein açısından zengin proteinlerle stabilize edilmiş iç lipit-protein matrisinden oluşur.[22][23] Bu bileşim, ookistleri belediye su arıtımı için standart olan klor dezenfeksiyon seviyelerine (10 mg/L’ye kadar), kurumaya, donmaya ve UV radyasyonuna karşı oldukça dirençli hale getirerek su, toprak ve dışkıda aylarca kalabilmelerini sağlar.[8][1] Bu dayanıklılık, kontamine su veya yiyecek yoluyla fekal-oral bulaşmayı kolaylaştırır ve Cryptosporidium‘u Giardia gibi daha az dayanıklı protozoanlardan ayırır.[2]

Cryptosporidium‘un hücre içi nişi, konakçı hücrenin fırçamsı kenarında (brush border) ekstrasitoplazmik olarak konumlanan benzersiz bir parazitofor vakuole sahiptir. Bu vakuol, derin konakçı hücre penetrasyonu olmadan bağırsak lümeninden doğrudan besin alımını sağlayan bir besleyici organel ile bağlantılıdır.[17] Bu konumlanma, merogoni ve gametogoniyi desteklerken bağışıklık sistemi tarafından tespit edilmeyi en aza indirir. Eksistasyon öncesi gelişim evrelerini ookist iç kısmına bağlayan müsin benzeri glikoproteinler gibi adaptasyonlar da mevcuttur.[24] Konakçı adaptasyonu, insanlarda yaygın olan C. hominis ile zoonotik C. parvum arasındaki farklarda görüldüğü gibi genetik uzmanlaşma yoluyla gerçekleşir. Bununla birlikte, türler arasındaki geniş enfektivite, bağlanma ve penetrasyon için çoklu salgı organellerini içeren istila mekanizmalarındaki evrimsel çok yönlülüğün altını çizer.[2][14] Bu özellikler toplu olarak bulaşma verimliliğini ve konakçı dışındaki hayatta kalma süresini artırarak, su kaynaklı ishal hastalıklarının önde gelen nedenlerinden biri olma rolüne katkıda bulunur.[25]

Yaşam Döngüsü

Gelişim Evreleri

Cryptosporidium‘un gelişim evreleri, öncelikle konakçı bağırsak epitel hücrelerinin mikrovillus bölgesinde, parazitin konakçı hücrenin apikal zarına yakınlığını koruyan benzersiz bir parazitofor vakuol içinde gerçekleşir. Döngü, yutulan sporlanmış ookistlerin ince bağırsakta düşük pH, safra tuzları ve sindirim enzimleri gibi faktörlerle tetiklenen eksistasyonu ile başlar. Ookist başına dört hareketli sporozoit serbest kalır; yaklaşık 4-6 μm uzunluğundaki bu sporozoitler, apikal bağlanma ve invajinasyon süreci yoluyla enterositleri aktif olarak istila eder.[2][26]

Hücre içine girdikten sonra sporozoitler, konakçı hücre sitoplazmasıyla beslenen trofozoitlere (ilk beslenme ve büyüme evresi) dönüşür ve tip 1 merontları oluşturmak için şizogoni (eşeysiz merogoni) geçirir. Bu merontlar, çoklu nükleer bölünmeler (8 çekirdek veren üç senkronize döngüye kadar) yoluyla tipik olarak 8 ila 16 merozoit üretir. Serbest kalan merozoitler bitişik hücreleri yeniden enfekte ederek enfeksiyonun eksponansiyel eşeysiz çoğalmasını kolaylaştırır.[26] Geleneksel modelde, tip 1 merontlardan veya sonraki nesillerden gelen merozoitlerin bir alt kümesi tip 2 merontlara dönüşür. Bunlar, eşeyli farklılaşmaya (seksüel diferansiyasyon) giden daha az sayıda (4) merozoit üretir: mikrogamontlar (erkek, 16 kamçılı mikrogamet üretmek için daha fazla bölünür) veya makrogamontlar (dişi, tek bir makrogamet ve duvar oluşturucu cisimler içerir).[26] Mikrogametler, makrogamontları dölleyerek diploid bir zigot üretir. Zigot, sporogoni geçirerek sporozoit içeren yeni ookistlere dönüşür; yaklaşık %20’si ince duvarlıdır ve konakçı içinde açılarak otoenfeksiyona (kendi kendine bulaşma) neden olurken, %80’i kalın duvarlıdır ve dışkı yoluyla atılım ve bulaşma için çevresel olarak dirençlidir.[2][26]

Son zamanlarda yapılan canlı hücre görüntüleme ve nükleer izleme çalışmaları, eşeyli evrelerin (erkek ve dişi gamontlar) ayrı bir tip 2 meront ara maddesi olmaksızın doğrudan tip 1 merontların soyundan gelebileceğini göstermektedir. Bu, 8 çekirdekli eşeysiz merontların ardından tutarlı bir şekilde 16 mikrogametli erkek gamontların ve bölünmeyen dişi gametlerin görülmesiyle desteklenmektedir. Tam döngü 72 saatin altında tamamlanır ve eşeyli gelişime geçiş, 2-3 eşeysiz nesilden sonra içsel olarak (intrinsik) gerçekleşir.[27] C. parvum in vitro kültürlerinden elde edilen bu bulgular, yalnızca üç birincil hücre içi gelişim formunu (eşeysiz tip 1 merontlar, erkek gamontlar ve dişi gametler) öne sürmektedir. Bu durum, parazitin monoksen (tek konakçılı) doğasını ve hem çoğalma hem de bulaşma kapasitesini korurken yaşam döngüsünü potansiyel olarak basitleştirmektedir.[27] Hücre dışı evreler gözlemlenmiştir ancak rolleri belirsizdir ve temel gelişim için gerekli değildir.[2]

Konakçı İstilası ve Replikasyon Mekanizmaları

İnce bağırsakta eksistasyona uğrayan ookistlerden salınan sporozoitler, ilk bağlanma için konakçı aktin polimerizasyonunu gerektirmeyen, korunmuş bir aktin-miyozin motor kompleksi tarafından yönlendirilen kayma hareketini (gliding motility) kullanarak enterositleri aktif olarak istila eder.[28] Bu süreç, konakçı hücreye bağlanmayı kolaylaştırmak ve istila bölgesini modüle etmek için ROP1 gibi efektör proteinleri boşaltan mikronemler ve roptriler gibi apikal organellerden salgılanmayı içerir.[29] Fırçamsı kenarda lokalize glikoz ve su aracılı zar çıkıntılarını içeren konakçı hücre yanıtları, paraziti sarmaya yardımcı olarak benzersiz bir parazitofor vakuol (PV) oluşturur. Bu vakuol hücre içindedir ancak sitoplazma dışındadır; konakçı plazma zarının altında konumlanır ve hem parazit hem de konakçı zarlarıyla kaplıdır.[30][31]

PV içinde sporozoit bir trofozoite dönüşür ve merogoni yoluyla eşeysiz replikasyona girer. Çoklu mitotik döngüler yoluyla meront başına 8–16 merozoit veren tip 1 merontlar üretilir.[32][3] Bu merozoitler, parazit aspartil proteazlarını içeren konakçı hücreden çıkış mekanizmaları yoluyla bağırsak lümenine salınır, ardından eşeysiz çoğalmayı sürdürmek ve yüksek parazit yükünü devam ettirmek için bitişik enterositleri yeniden istila eder.[33] Merontların bir alt kümesi, eşeyli evreleri (kamçılı mikrogametler üreten mikrogamontlar ve makrogametler oluşturan makrogamontlar) oluşturan tip 2 merontlara farklılaşır. Bu süreç, PV içinde döllenmeye ve yeni ookistlere olgunlaşan zigotların gelişimine yol açar.[32] Bu ikili eşeysiz-eşeyli replikasyon döngüsü yalnızca tek bir konakçı içinde gerçekleşir ve dökülen ookistler aracılığıyla hızlı yayılma ve bulaşmayı sağlar.[34] Parazit, PV modifikasyonları yoluyla lizozomal füzyondan kaçarken hücre içi hayatta kalma ve bölünmeyi desteklemek için PI3K ve Src gibi konakçı sinyal yollarını kullanır.[35]

Bulaşma ve Rezervuarlar

Zoonotik ve Antroponotik Bulaşma

İnsanları enfekte eden Cryptosporidium türleri, hayvandan insana sıçramayı içeren zoonotik bulaşma ve öncelikle insanlar arasında gerçekleşen antroponotik bulaşma ile belirgin bulaşma modelleri sergiler. C. parvum, enfekte buzağıların su kaynaklarını veya doğrudan temas ortamlarını kontamine eden yüksek sayıda ookist saçtığı sığır gibi çiftlik hayvanı rezervuarlarıyla yaygın olarak ilişkilendirilen baskın zoonotik türdür. Moleküler genotipleme çalışmaları, insan kriptosporidiyoz vakalarındaki C. parvum alt tiplerini çiftlik hayvanlarından izole edilenlerle sık sık eşleştirerek zoonotik bağlantıya dair doğrudan kanıt sağlamıştır. Örneğin, kırsal Wisconsin’de sporadik insan enfeksiyonlarının %70’inden fazlası insana adapte olmuş suşlardan ziyade zoonotik C. parvum‘a atfedilmiştir.[36][37] Buzağı teması veya pastörize edilmemiş süt ürünleriyle bağlantılı olanlar da dâhil olmak üzere salgın araştırmaları, hem buzağılarda hem de insanlarda deneysel olarak kanıtlanmış enfektivite ile buzağıların önemli bir zoonotik kaynak olduğunu daha da doğrulamaktadır.[38][39]

Buna karşılık C. hominis, insanların birincil rezervuar olduğu ve bulaşmanın fekal-oral yollarla gerçekleştiği, genellikle su kaynaklı salgınlarda veya yetersiz sanitasyona sahip kalabalık ortamlarda artış gösteren bir antroponotik döngü izler. Genotipleme, insan vakalarındaki C. hominis izolatlarının hayvan kaynaklarıyla nadiren eşleştiğini ortaya koyarak konakçı adaptasyonunun ve sınırlı hayvan enfektivitesinin altını çizer; deneysel ve saha verileri, fareler veya çiftlik hayvanları gibi insan dışı konakçılara bulaşma oranının düşük olduğunu doğrulamaktadır.[2][40][41] Antroponotik baskınlık, IbA10G2 gibi alt tiplerin hayvan katılımı olmadan çok sayıda insan salgınına yol açtığı kentsel veya düşük gelirli bölgelerde belirgindir.[42]

Bazı C. parvum alt tiplerinin (ör. IIc) hijyenin kötü olduğu gelişmekte olan ülkelerde antroponotik modeller göstermesi, HIV pozitif bireylerde baskın olması ve zoonotik türlerde bile insandan insana çoğalmayı düşündürmesi gibi nüanslar mevcuttur.[43] Tersine, atlar veya primatlar gibi hayvanlarda sporadik C. hominis tespitleri ters zoonoz (insandan hayvana bulaş) sorularını gündeme getirse de, çoklu lokus analizleri bunların yerleşik rezervuarlardan ziyade muhtemelen insan kaynaklı sıçramalar olduğunu ve genom sekanslamasının insan özgüllüğünü doğruladığını göstermektedir.[44] Bölgesel epidemiyoloji yaygınlığı etkiler: Gelişmiş ülkelerin tarımsal bölgelerinde zoonotik bulaşma yaygınken (ör. sığır maruziyetinin vakalarla güçlü bir korelasyon gösterdiği Finlandiya), Afrika’da antroponotik döngüler baskındır ve insan atığı kontaminasyonu yoluyla pediatrik yüke katkıda bulunur.[45][39] Genel olarak, gp60 alt tiplemesi gibi moleküler araçlar bu dinamikleri açıklığa kavuşturmuş ve küresel olarak zoonozların çoğundan C. parvum sorumlu olsa da, yüksek yoğunluklu insan popülasyonlarında bulaşmayı antroponotik C. hominis‘in yönlendirdiğini ortaya koymuştur.[37]

Çevresel Kalıcılık ve Hayvan Rezervuarları

Cryptosporidium ookistleri, kalın duvarlı yapıları sayesinde konakçı dışında uzun süre hayatta kalmalarını sağlayan olağanüstü bir çevresel direnç sergiler. Suda, C. parvum ookistleri serin ve karanlık koşullar altında aylarca kalabilir ve düşük bulanıklıklı ortamlarda bir yıla kadar enfektivitelerini koruyabilir.[4] Nemli toprakta hayatta kalma süresi birkaç aya kadar uzar; özellikle 15°C’nin altındaki sıcaklıklarda ölüm oranları minimumdur (yüzey suyunda günde yaklaşık 0,005).[46][47] Yüksek sıcaklıklar inaktivasyonu hızlandırır; ookist duvarı lipitlerinin ve hidrokarbonlarının bozulması nedeniyle canlılık 30–50°C’nin üzerinde keskin bir şekilde düşer.[48] Ookist ayrıca geniş pH aralıklarını ve kurumayı (desikasyon) tolere eder, ancak aşırı uçlara uzun süre maruz kalmak ömrü kısaltır.[49]

Dezenfektanlar ookistler için sınırlı tehdit oluşturur ve bu da su kaynaklı salgınlardaki rollerine katkıda bulunur. Tipik içme suyu konsantrasyonlarındaki (ör. 5 mg/L) klor bazlı işlemler yalnızca kısmi inaktivasyon sağlar; mütevazı log düşüşleri (ör. 895 dak·mg/L CT değerinde 0,4 log) için 300 dakikayı aşan temas süreleri gerekir.[50] C. parvum ookistleri standart klorlamaya direnç gösterir; bu da laboratuvar ortamında etkili bir azalma için hidrojen peroksit (%6, 20 dakika temas) veya peroksijen bazlı ajanlar gibi alternatifleri zorunlu kılar.[51][52] Bu direnç, düşük enfeksiyon dozlarıyla (insanlar için 10–100 ookist kadar az) birleştiğinde, arıtılmamış veya yetersiz arıtılmış su kaynaklarında çevresel bulaşma risklerini artırır.[4]

Hayvan rezervuarları Cryptosporidium bulaşma döngülerini sürdürür; C. parvum gibi zoonotik türler yaban hayatı, çiftlik hayvanları ve insanlar arasında fekal-oral yollarla köprü kurar. Sığırlar birincil rezervuar görevi görür; suyu ve toprağı kontamine eden yüksek ookist yükleri saçarak, doğrudan temas veya çevresel maruziyet yoluyla insanlara yayılmayı kolaylaştırır.[53][54] Diğer evcil konakçılar arasında koyunlar, keçiler, domuzlar, atlar, köpekler ve kediler bulunurken; kemirgenler, kuşlar ve sürüngenler gibi yaban hayatı zoonotik potansiyeli olan çeşitli genotipleri barındırır.[55][56] Sporadik insan vakalarından elde edilen moleküler kanıtlar, özellikle hayvana adapte olmuş suşların zoonotik bulaşmasını doğrulamakta ve endemik bölgelerde çiftlik hayvanlarının ve yaban hayatının kilit amplifikatörler (çoğaltıcılar) olduğunun altını çizmektedir.[36][2] Su kütlelerinin yakınında otlatma gibi çiftlik yönetimi uygulamaları, antroponotik döngülerden bağımsız olarak rezervuardan insana geçişi şiddetlendirir.[57]

Epidemiyoloji

Küresel ve Bölgesel Yaygınlık

Cryptosporidium enfeksiyonu, tanısal çalışmaların 2020 yılındaki bir meta-analizine göre, insan popülasyonlarında %7,6’lık (%95 GA: %6,9–8,5) küresel bir havuzlanmış prevalans sergiler.[58] Bu rakam, yetersiz sanitasyon, kontamine su kaynakları ve zoonotik maruziyetler gibi faktörlerin etkisiyle, gelişmekte olan bölgelerde (ortalama %10,4), gelişmiş ülkelere (ortalama %4,3) kıyasla daha yüksek oranları yansıtmaktadır.[59] 2016 yılında bu patojen, dünya genelinde 5 yaş altı çocuklarda ishal hastalığının önde gelen beşinci nedeni olarak sıralanmış ve yetersiz teşhisin kesin yük tahminlerini sınırladığı düşük gelirli ortamlarda ağırlıklı olmak üzere yılda 48.000’den fazla ölüme katkıda bulunmuştur.

Prevalans, ookistlerin çevresel kalıcılığı ve sınırlı su arıtma altyapısı nedeniyle yüksek bulaşma gösteren düşük gelirli ve tropikal bölgelerde belirgin şekilde değişmektedir. Yüksek gelirli ülkelerde, semptomatik testlere güvenilmesi nedeniyle eksik bildirimler olsa da, bildirilen insidans 100.000 nüfus başına 1 vakanın altında kalarak düşük seyretmektedir.[60] Örneğin, Amerika Birleşik Devletleri yılda tahmini 823.000 vaka (100.000’de yaklaşık 2-3) bildirmekte olup, bunların yaklaşık %10’u endemik bölgelere yapılan uluslararası seyahatlerle bağlantılıdır.[60] Avrupa da benzer düşük oranlar bildirmekte olup, 2019 gözetim verilerine göre kriptosporidiyoz bildirimleri 100.000’de 3–5 civarındadır ve kuzey ve batı ülkelerinde yoğunlaşmıştır.[3]

Düşük ve orta gelirli bölgelerde, özellikle Sahra Altı Afrika ve Güney Asya’da prevalans %8 veya daha yükseğe ulaşmakta, toplum taramalarında pediatrik enfeksiyonlar %10–20’yi aşmaktadır.[60] Afrika çalışmaları, Mısır’daki zirveler de dâhil olmak üzere Orta Doğu ve Kuzey Afrika’nın bazı bölgelerinde %24,5’e varan oranlarla antroponotik (insandan insana) bulaşmanın baskın olduğunu göstermektedir.[45] Asya prevalansı bu modeli yansıtmakta olup, moleküler araştırmalar Güneydoğu ve Güney Asya’daki çocuklarda muson yağmurlarına bağlı kontaminasyonla şiddetlenen %7–15’lik oranlar göstermektedir.[61] Amerika kıtası, Güney ve Orta bölgelerde mikroskopi ile %7–8 oranında orta düzeyde seviyeler sergilerken, Kuzey Amerika oranları sanayileşmiş normlara daha yakındır.[62]

Bölge Tahmini Prevalans Aralığı Önemli Notlar
Yüksek Gelirli (ör. ABD, Avrupa) <%1–3 (100.000’de insidans) Eksik raporlama yaygındır; seyahat ilişkili vakalar dikkat çekicidir.[60][3]
Sahra Altı Afrika %8–24,5 Yüksek pediatrik yük; antroponotik odak.[45][60]
Asya (MENA dâhil) %7–15 Mevsimsel zirveler; sanitasyon erişimine göre değişkenlik.[61]
Latin Amerika %7–8 Mikroskopi tabanlı; kırsal alanlarda daha yüksek.[62]

Önemli Tarihsel ve Yakın Geçmişteki Salgınlar

Belgelenmiş en büyük kriptosporidiyoz salgını, Mart sonu ile Nisan 1993 başlarında Milwaukee, Wisconsin’de meydana gelmiştir. Bir belediye su arıtma tesisindeki yetersiz filtrasyon, yoğun bahar akıntısı ve kanalizasyonla kirlenmiş kaynak suyundan Cryptosporidium ookistlerini temizleyememiştir. Bu durum, şehrin nüfusunun yaklaşık yarısı olan tahmini 403.000 sakini etkilemiş ve öncelikle bağışıklığı baskılanmış bireyler arasında en az 69 ölümle sonuçlanmıştır.[63][64] ABD tarihindeki en önemli su kaynaklı hastalık salgını olan bu olay, yaygın akut gastroenterite, okul ve iş yeri kapanışlarına ve tıbbi bakım ve verimlilik kayıplarında 96 milyon doları aşan ekonomik maliyetlere yol açmıştır.[65]

Cryptosporidium‘un su kaynaklı bir patojen olarak daha erken tanınması, 1984 yılında Braun Station, Teksas’ta yaşanan bir salgından kaynaklanmıştır. Burada 2.000’den fazla vaka, içme suyu için kullanılan kontamine yeraltı suyuna bağlanmış ve parazitin standart klorlamaya karşı direnci vurgulanmıştır.[4]

Avrupa’da, Kasım 2010’da Östersund, İsveç’te büyük bir su kaynaklı salgın meydana gelmiştir. Atık suyun bir arıtma tesisine karışması sonucu belediye şebekesi C. hominis ile kontamine olmuş, yaklaşık 27.000 kişi (nüfusun yaklaşık %45’i) hastalanmış ve iki ay süren bir “suyu kaynatma uyarısı” verilmiştir.[66] Aynı bölgede 2011 yılında benzer ancak daha küçük bir olay meydana gelmiş ve yaklaşık 47.000 etkilenen birey ile İsveç’in Avrupa’nın en büyük kombine salgınları kaydına katkıda bulunmuştur.[67]

Daha yakın bir tarihte, Mayıs 2024’te Birleşik Krallık, Brixham, Devon’da bir kriptosporidiyoz salgını, hasarlı bir hava valfinin dağıtım sistemine fekal kontaminasyon girişine izin vermesiyle izlenmiştir. 143 laboratuvar onaylı vaka ve şüphelenilen yüzlerce vaka doğrulanmış, şişelenmiş su dağıtımı ve uzun süreli kaynatma uyarısı yerel işletmeleri ve turizmi aksatmıştır.[68][69] ABD’de, rekreasyonel su mekanları çok sayıda daha küçük salgına yol açmıştır; örneğin, 2009’dan 2017’ye kadar 40 eyalet ve Porto Riko’da 444 olay 7.465 vakaya neden olmuş, bu da yetersiz klorlanmış havuzlardan ve su parklarından kaynaklanan kalıcı risklerin altını çizmiştir.[70] İngiltere, 2024 yılında toplam 1.544 vaka ile 32 salgın bildirmiş, birçoğu hayvan teması veya özel su kaynaklarıyla ilişkilendirilmiş, mevsimsel zirveleri yansıtmış ancak tarihsel ölçeklerle rekabet eden tek bir olay yaşanmamıştır.[71]

Risk Faktörleri ve Savunmasız Popülasyonlar

Yüzme havuzları veya göller gibi kontamine rekreasyonel sularla temas, parazitin yüksek klor direnci ve genellikle 10-132 ookist gibi düşük enfeksiyon dozu nedeniyle Cryptosporidium enfeksiyonu için birincil bir risk faktörü oluşturur.[72] Enfekte insanlar veya hayvanlardan (buzağılar, diğer çiftlik hayvanları veya evcil hayvanlar) gelen dışkıya doğrudan veya dolaylı maruziyet, özellikle tarımsal ortamlarda veya hayvancılık faaliyetleri sırasında fekal-oral bulaşma yoluyla riski artırır.[72][73] Pastörize edilmemiş süt, elma şırası veya arıtılmamış su kaynaklarının tüketimi de bu araçlarla bağlantılı salgınlarla kanıtlandığı üzere katkıda bulunur.[70] Düşük ve orta gelirli ülkelerde yetersiz sanitasyon, aşırı kalabalık ve açıkta dışkılama, kontamine içme suyu veya ev ortamları yoluyla bulaşmayı artırır.[73]

Özellikle Sahra Altı Afrika, Güney Amerika ve Asya’daki endemik bölgelere yapılan uluslararası seyahatler, değişken su kalitesi ve hijyen standartları nedeniyle maruziyet riskini artırır.[72][74] Çocuk bakım ortamları veya bebek bezi değiştiren bakıcılar arasında olduğu gibi enfekte bireylerle temas, insandan insana yayılmayı kolaylaştırır; çocuk bakımı çalışanları ve küçük çocuklar yüksek olasılıkla karşı karşıyadır.[75] HIV/AIDS, organ nakli veya kemoterapi dâhil olmak üzere bağışıklığı baskılayan durumlar, ookist temizliği için gerekli olan hücresel bağışıklığı bozarak enfeksiyon olasılığını ve şiddetini bağımsız olarak artırır.[61][76]

5 yaşın altındaki küçük çocuklar, özellikle 1-4 yaşındakiler, nesneleri ağzına götürme, bebek bezi kullanımı ve olgunlaşmamış bağışıklık tepkileri gibi davranışlara atfedilen gözetim verilerinde en yüksek insidans oranlarını sergiler.[77][60] İleri evre HIV (CD4 < 200 hücre/µL) hastaları, immünosupresan kullanan nakil alıcıları ve kanser hastaları dâhil olmak üzere bağışıklığı baskılanmış bireyler, standart tedavilere yanıt vermeyen, uzun süreli ve potansiyel olarak yaşamı tehdit eden ishalden muzdariptir.[75][78] Kaynakları sınırlı ortamlardaki yetersiz beslenen popülasyonlar, endemik bölgelerdeki kohort çalışmalarında gözlemlendiği gibi, Cryptosporidium‘un bodurluğu (büyüme geriliği) ve ölüm oranını artırdığı bileşik bir savunmasızlıkla karşı karşıyadır.[73] Yaşlı hastanede yatan hastalar ve altta yatan gastrointestinal rahatsızlıkları olanlar da ciddi sonuçlar yaşayabilir, ancak veriler pediatrik ve bağışıklığı baskılanmış gruplara kıyasla genel insidansın daha düşük olduğunu göstermektedir.[79]

Patogenez ve Klinik Etki

Enfeksiyon Mekanizmaları ve Bağışıklık Sisteminden Kaçış

Kontamine su veya yiyecek yoluyla yutulan Cryptosporidium ookistleri, safra tuzları ve pankreas enzimlerinin etkisi altında ince bağırsakta açılır (eksistasyon) ve epitel enterositlerin apikal yüzeyini aktif olarak istila eden hareketli sporozoitleri serbest bırakır.[80] Bu sporozoitler, konakçı hücrelere bağlanmak ve nüfuz etmek için aktin-miyozin etkileşimlerini içeren bir “glideozom” tabanlı hareketlilik sistemi kullanır. Hücre içinde ancak sitoplazma dışında (ekstrasitoplazmik) konumlanan, konakçı sitoplazmasından besinleri çeken bir besleyici organel ile sabitlenen benzersiz bir parazitofor vakuol oluştururlar.[81] İstila üzerine sporozoitler trofozoitlere dönüşerek merogoni yoluyla eşeysiz replikasyonu başlatır: Tip 1 merontlar, bitişik hücreleri yeniden istila ederek enfeksiyonu sürdüren invaziv merozoitler üretirken; tip 2 merontlar, mikrogamontlar ve makrogamontlar dâhil olmak üzere eşeyli evrelere dönüşen ve döllenme ile ookist üretimiyle sonuçlanan merozoitler verir.[81] In vitro ortamda yaklaşık 48 saat içinde cinsel taahhütten önce birden fazla eşeysiz turu tamamlayan bu döngü, besin alımını, istila için hücre iskeleti yeniden şekillenmesini ve konakçı otofajik tepkilerinin baskılanmasını kolaylaştırmak için PI3K/Akt ve EGFR gibi konakçı sinyal yollarını kullanır.[82][83]

Doğuştan gelen konakçı savunmalarından kaçmak için Cryptosporidium, enfekte olmuş enterosit apoptozunu (programlanmış hücre ölümü) modüle eder. Hücre ölümünü inhibe ederek çoğalma için uygun bir niş sağlarken epitel yenilenmesi yoluyla erken atılmayı önler.[84] Parazit, bağışıklık efektörlerinden gelen TRAIL aracılı sitotoksisiteyi nötralize eden bir tuzak reseptör olan konakçı osteoprotegerin ekspresyonunu yukarı doğru düzenler (upregüle eder), böylece enfekte olmuş hücreleri dış ölüm yollarından korur.[85] Ek olarak, C. parvum, lizozomal bölmelere yakınlığına rağmen hücre içi kalıcılığa izin vererek önemli bir antimikrobiyal mekanizma olan epitel otofajisini azaltmak için konakçı uzun kodlamayan RNA’larını (lncRNA) ele geçirir.[86] Parazit, epitel hücrelerinde tip I interferon sinyalini aktive ederek (paradoksal olarak anti-parazit savunmalarına zarar verir), etkili doğuştan gelen bağışıklığı bozar; bu durum IFNAR blokajının temizliği artırdığı modellerde kanıtlanmıştır.[87] Parazitin luminal bağışıklık faktörlerine maruz kalmayı en aza indiren apikal konumuyla birleşen bu stratejiler, düşük dozlu enfeksiyonların (132 ookist kadar az) özellikle bağışıklığı baskılanmış konakçılarda kronikleşmesini sağlar.[3]

İnsanlarda Semptomlar ve Hastalık Seyri

İnsanlarda Cryptosporidium enfeksiyonu (kriptosporidiyoz), öncelikle sulu ishal ile kendini gösterir; buna karın krampları, mide bulantısı, kusma, düşük dereceli ateş ve yorgunluk eşlik eder.[88][6] Ek semptomlar arasında dehidrasyon, kilo kaybı ve iştahsızlık yer alabilir, ancak bazı enfeksiyonlar özellikle immünokompetan bireylerde asemptomatik kalır.[2][89] Kuluçka süresi ortalama 7 gündür; canlı ookistlerin yutulmasını takiben 2 ila 10 gün arasında değişir.[2]

İmmünokompetan konakçılarda hastalık seyri tipik olarak akut ve kendi kendini sınırlayıcıdır. Semptomlar ilk hafta içinde zirve yapar ve 2 ila 3 hafta içinde düzelir, ancak süreler birkaç günden 4 haftanın üzerine kadar uzayabilir.[88][6] İshal genellikle bol ve kansızdır; dışkı hacmi günde birkaç litreye kadar çıkabilir, ancak ciddi dehidrasyon gibi komplikasyonlar genç yaş veya eşzamanlı hastalık gibi yatkınlık yaratan faktörler olmadan nadirdir.[89] Dışkıda ookist atılımı semptomların düzelmesinin ötesinde devam eder, genellikle 2 hafta içinde durur ancak 2 aya kadar sürebilir, bu da devam eden bulaşma riskini kolaylaştırır.[2][90]

HIV/AIDS, organ nakli alıcıları veya birincil immün yetmezlikleri olanlar gibi bağışıklığı baskılanmış bireylerde enfeksiyon daha şiddetli ve uzun süreli bir seyir izler. Bağışıklık sistemi toparlanmadığı sürece aylarca sürebilen kronik, bol sulu ishal ile karakterizedir.[91][92] Bu durum derin dehidrasyona, elektrolit dengesizliklerine, malabsorpsiyona ve önemli kilo kaybına yol açabilir. Antiretroviral tedavi ilerlemelerinden önce tedavi edilmemiş AIDS hastalarında ölüm oranları tarihsel olarak %50’yi aşmıştır.[89][93] Sağlıklı konakçıların aksine, ookist atılımı devam eden semptomlarla yakından ilişkilidir ve konakçı bağışıklığı iyileşene kadar süresiz olarak devam edebilir.[92]

Sanayileşmiş ortamlarda vakaların %25’ine kadarında bildirilen enfeksiyon sonrası sekeller; akut iyileşmeden sonra potansiyel olarak aylarca süren tekrarlayan ishal, karın ağrısı, mide bulantısı ve yorgunluk gibi uzun süreli gastrointestinal semptomları içerir.[94] Bu etkiler salgınları takiben veya savunmasız gruplarda daha sıktır ancak genellikle özel bir müdahale olmaksızın azalır.[94]

Bağışıklığı Baskılanmış Bireylerde ve Hayvanlarda Şiddet

İmmün sistemi baskılanmış insanlarda, özellikle ileri evre HIV/AIDS ve 50 hücre/mm³ altı CD4 sayısına sahip olanlarda, Cryptosporidium enfeksiyonu sıklıkla haftalarca veya aylarca süren kronik, bol sulu ishale dönüşür. Buna şiddetli dehidrasyon, elektrolit dengesizlikleri ve kilo kaybı ile erimeye (wasting) yol açan malabsorpsiyon eşlik eder.[89][3] Bu durum, semptomların 1-2 hafta içinde düzeldiği immünokompetan konakçılardaki kendi kendini sınırlayan hastalıkla tezat oluşturur; bu tür savunmasız hastalarda enfeksiyon hücre aracılı bağışıklıktan kaçarak kalıcı epitel istilasına ve enflamasyona izin verir.[95][84] Yaygın antiretroviral tedaviden önce, kriptosporidiyoz, yüksek ölüm oranlarıyla ilişkili sık görülen bir AIDS tanımlayıcı fırsatçı enfeksiyondu. Tedavi edilmeyen vakalarda ishal kaynaklı ölümlerin üçte birine kadar katkıda bulunmuş, sklerozan kolanjit gibi bağırsak dışı komplikasyonlar sonuçları daha da kötüleştirmiştir.[79][96] Bağışıklık yeniden yapılandırılsa bile, CD4 iyileşmesi eksikse nüks riskleri devam eder.[97]

Nakil alıcıları veya birincil immün yetmezlikleri olanlar gibi diğer bağışıklığı baskılanmış gruplarda şiddet, HIV vakalarını yansıtır; uzun süreli gastrointestinal semptomlar ve potansiyel biliyer veya solunum tutulumu görülür, ancak daha iyi genel yönetim nedeniyle ölümcül olma sıklığı daha düşüktür.[98][84] Endemik bölgelerdeki yetersiz beslenen çocuklar da, besin eksikliklerinden kaynaklanan büyüme geriliği ve bilişsel gecikmelerle bağlantılı kalıcı enfeksiyonla birlikte artan bir savunmasızlık yaşarlar.[99]

Hayvanlarda, Cryptosporidium enfeksiyonları en şiddetli olarak olgunlaşmamış bağışıklık sistemine sahip yenidoğanlarda, örneğin 2 aylıktan küçük buzağılarda görülür. C. parvum bu hayvanlarda bol sulu ishal, uyuşukluk, iştahsızlık ve dehidrasyona neden olur; bu da genellikle büyüme geriliğine, artan veterinerlik maliyetlerine ve salgınlarda %10-20’ye varan ölüm oranlarına yol açar.[100][101][54] Genç ruminantlar villöz atrofi ve bozulmuş sıvı emilimi yaşayarak klinik etkiyi artırır; genel çiftlik hayvanı ölüm oranı düşük kalsa da (%5’in altında), süt buzağılarındaki şiddetli vakalar, itlaf (culling) ve azalan verimlilik yoluyla etkilenen bölgelerde yıllık 100 milyon doları aşan ekonomik kayıplara neden olur.[102][8] Kümes hayvanlarında ve kuzular gibi diğer türlerde semptomlar daha hafiftir ancak trakeit şiddeti ve kilo kaybı ile korele olan solunum tutulumunu (kuşlarda C. baileyi) içerebilir.[103] Yetişkin hayvanlar, adaptif bağışıklık nedeniyle tipik olarak subklinik veya hafif enfeksiyonlar sergiler.[104]

Tanı ve Gözetim

Klinik ve Laboratuvar Tanı Yöntemleri

Kriptosporidiyoz tanısı, akut sulu ishal, karın krampları ve düşük dereceli ateş ile tetiklenen klinik şüpheye dayanır. Bu durum genellikle kontamine suya maruz kalma, hayvan teması veya immün yetmezlik bağlamında ortaya çıkar, ancak spesifik olmayan semptomların diğer enterik patojenlerle örtüşmesi nedeniyle laboratuvar doğrulaması esastır.[105] Dışkı örnekleri birincil numune tipidir; aralıklı ookist atılımını hesaba katmak için ardışık günlerde birden fazla toplama önerilir, çünkü tek numunelerde tespit oranları düşebilir.[106] Standart yumurta ve parazit (O&P) incelemeleri, organizmanın küçük boyutu (4-6 µm) ve geleneksel konsantrasyon yöntemlerine direnci nedeniyle, özellikle talep edilmedikçe genellikle Cryptosporidium ookistlerini kaçırır; hedefe yönelik boyama veya testler gerektirir.[105][107]

Mikroskobik yöntemler, dışkıda ookistlerin doğrudan görselleştirilmesi için temel olmaya devam etmektedir. Ziehl-Neelsen veya Kinyoun tekniği gibi modifiye asit-fast boyama, ookistlerin renk giderimine karşı direncini kullanarak onları yeşil bir arka plan üzerinde kırmızı renkte gösterir. Otofioresansı UV ışığı altında tespit eden floresan mikroskobu ile hassasiyet artırılır.[108] Doğrudan floresan antikor (DFA) testleri, florokromlara konjuge edilmiş monoklonal antikorlar kullanarak özgüllüğü artırır ve gram dışkı başına 100-200 ookist kadar düşük tespit limitlerine ulaşır; ancak mayalardan veya döküntülerden ayırt etmek için yetenekli yorumlama gerektirir.[2] Bu teknikler uygun maliyetli olmakla birlikte, özellikle düşük yüklü enfeksiyonlarda moleküler yöntemlere kıyasla daha düşük hassasiyete (%50-80) sahiptir ve ek genotipleme olmaksızın türleri rutin olarak ayırt edemez.[107][109]

Antijen tespit testleri, rutin klinik kullanım için hızlı, mikroskobik olmayan alternatifler sunar. Enzim immünoanalizleri (EIA) ve immünokromatografik yanal akış testleri, dışkıdaki Cryptosporidium‘a özgü yüzey antijenlerini hedefler. Semptomatik hastalarda %90-100 hassasiyet ve %95’i aşan özgüllük sunar; hasta başı formatları kullanılarak sonuçlar 15-60 dakika içinde alınabilir.[2] DFA veya EIA için ticari kitler FDA onaylıdır ve yaygın olarak bulunur, ancak diğer protozoalarla çapraz reaktivite minimal de olsa rapor edilmiştir, bu da düşük prevalanslı ortamlarda doğrulayıcı test gerektirir.[110] Bu yöntemler hız ve kolaylık açısından mikroskopiden üstündür, ancak canlı olmayan ookistlerden veya çevresel kirleticilerden yanlış pozitif sonuçlar verebilir.[111]

Moleküler tanılar, özellikle 18S rRNA veya gp60 genlerini hedefleyen gerçek zamanlı PCR, numune başına 1-10 ookist kadar azını tespit ederek en hassas yaklaşımı temsil eder ve salgın takibi için kritik olan tür/alt tip tanımlamasını sağlar.[107][112] Cryptosporidium dahil gastrointestinal patojenler için çoklu (multiplex) PCR panelleri, 2010’lardan bu yana referans laboratuvarlarında standart hale gelmiştir. Analitik hassasiyetleri antijen testlerini 10-100 kat aşmaktadır, ancak özel ekipman gerektirir ve asemptomatik taşıyıcılığı tespit edebilir.[113] PCR’nin faydası, dışkı testinin başarısız olduğu biliyer tutulumlu AIDS hastalarında olduğu gibi bağırsak dışı vakalarda biyopsi veya doku örneklerine kadar uzanır.[106] Avantajlarına rağmen, maliyet ve geri dönüş süresi rutin kullanımı sınırlar; kaynakları kısıtlı ortamlarda ilk tarama için mikroskopi veya antijen testleri tercih edilir.[114]

Su ve Gıdada Çevresel Tespit

Çevresel su kaynaklarında Cryptosporidium ookistlerinin tespiti, ookistler birçok dezenfektana dirençli olduğu ve yüzey sularında kalabildiği için içme suyu kalitesinin izlenmesi ve salgınların önlenmesi açısından esastır. ABD Çevre Koruma Ajansı (EPA) Yöntemi 1623.1, bu amaç için birincil standart protokol olarak hizmet eder. Bu yöntem, ookistleri yakalamak için büyük su hacimlerinin (tipik olarak 10 ila 100 litre) 1 µm gözenek boyutlu kartuş filtrelerden geçirilmesini (filtrasyon) içerir.[115][116] Sonraki adımlar; Laureth-12 gibi deterjanlar kullanılarak yakalanan malzemenin elüsyonunu, numuneyi konsantre etmek için 1500 × g’de santrifüjlemeyi, ookistleri döküntülerden arındırmak için manyetik boncuklara bağlı anti-ookist monoklonal antikorlarla immüno-manyetik ayırmayı (IMS) ve diferansiyel girişim kontrastı (DIC) ile birleştirilmiş epifloresan mikroskobu altında tanımlama için floresein izotiyosiyanat (FITC)-konjuge antikorlar ve 4′,6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) ile boyamayı içerir.[115][116] Bu yöntem ookistlerin sayımını sağlar ancak su bulanıklığı, organik içerik ve prosedür verimsizliklerinden etkilenen, genellikle %50 veya daha düşük değişken geri kazanım oranları sergiler.[116]

Yöntem 1623.1’in sınırlamaları arasında, floresan boyama enfektiviteden ziyade yapısal bütünlüğü tespit ettiğinden canlı ve canlı olmayan ookistleri ayırt edememesi ve potansiyel olarak riski olduğundan fazla tahmin etmesi yer alır.[115] Bunu ele almak için, IMS sonrası genotipleme için gp60 gibi Cryptosporidium‘a özgü genleri hedefleyen kantitatif polimeraz zincir reaksiyonu (qPCR) veya mRNA tespiti yoluyla canlılık değerlendirmesi için ters transkripsiyon PCR kullanmak gibi tamamlayıcı moleküler yaklaşımlar kullanılır; ancak hümik asitler gibi çevresel inhibitörler hassasiyeti azaltabilir ve DNA ekstraksiyon optimizasyonlarını gerektirir.[116] Akış sitometrisi entegrasyonu ve otomatik mikroskopi dâhil olmak üzere devam eden geliştirmeler, su havzaları ve arıtma tesislerinde rutin gözetim için hassasiyeti ve verimi artırmayı amaçlamaktadır.[116]

Gıda matrislerinde Cryptosporidium tespiti, kontaminasyonun fekal olarak kirli suyla sulama veya hayvan gübresinden kaynaklandığı yapraklı yeşillikler ve meyveler gibi ürünlerin yüzeylerindeki ookistleri hedefler. Uluslararası Standardizasyon Örgütü (ISO) 18744:2016, bu ürünler için doğrulanmış bir yöntem ana hatlarını çizer; bu yöntem, ookistleri yerinden çıkarmak için deterjanlar ve tuzlarla yıkama solüsyonlarında çalkalamayı, ardından konsantrasyon için eleme, santrifüjleme veya yüzdürmeyi, IMS saflaştırmasını ve immünofloresan test (IFA) mikroskobu veya PCR ile doğrulamayı gerektirir.[117] Et veya kabuklu deniz ürünleri gibi diğer gıdalar için protokoller benzer ilkeleri (homojenizasyon, matrisleri parçalamak için enzimatik sindirim ve IMS) uyarlar ancak lipit girişimi ve düşük ookist yüklerinden kaynaklanan artan zorluklarla karşılaşır, yeterli hassasiyet için genellikle 25-100 g numune gerektirir.[118][117]

Yuvalanmış (nested) PCR veya döngü aracılı izotermal amplifikasyon (LAMP) yoluyla moleküler doğrulama, gıda testlerinde özgüllüğü artırarak tür tanımlamasına (örneğin C. parvum ve C. hominis ayrımı) izin verir. Ancak ookist duvarının lizise direnci ve karmaşık matrislerdeki %20-30’un altındaki geri kazanım verimlilikleri nedeniyle yanlış negatifler devam etmektedir.[118] Eksistasyon sonrası propidyum iyodür dışlanması veya vital boya boyaması dâhil olmak üzere canlılık testleri araştırılmaktadır ancak gıda için nadiren standardize edilmiştir; bu da yüksek riskli tarımsal ortamlarda entegre biyoanalizlere duyulan ihtiyacı vurgulamaktadır.[119] Hem su hem de gıdadaki çevresel izleme, kontaminasyon seviyelerini ölçmek ve gelişmiş filtrasyon veya ürün yıkama protokolleri gibi müdahalelere rehberlik etmek için bu emek yoğun tekniklere öncelik vermektedir.[118]

Tedavi ve Yönetim

Farmakolojik Tedaviler ve Sınırlamalar

Geniş spektrumlu bir tiyazolid antiparaziter ajan olan Nitazoksanid, bağışıklık sistemi yetkin (immünokompetan) 12 aylık ve üzeri bireylerde kriptosporidiyoz tedavisi için ABD Gıda ve İlaç Dairesi (FDA) tarafından onaylanan tek ilaçtır. Onay, ishali plaseboya kıyasla yaklaşık 2-3 gün azalttığını gösteren klinik deneylerin ardından 2002 yılında verilmiştir.[120] Yetişkinlerde 3 gün boyunca günde iki kez 500 mg ve çocuklarda ayarlanmış dozlarda ağızdan uygulanan ilaç, piruvat-ferrodoksin oksidoredüktazı hedefleyerek parazit enerji metabolizmasını inhibe eder, ancak Cryptosporidium‘a karşı mekanizması kısmen aydınlatılmıştır.[121] Etkinlik, başka türlü sağlıklı hastalarda orta düzeydedir; randomize kontrollü çalışmalar ookist azalması ve vakaların %70-80’inde semptom çözülmesini göstermektedir, ancak ookist atılımı devam ederse nüks (relaps) meydana gelebilir.[122]

İleri evre HIV/AIDS hastaları veya organ nakli geçirenler gibi bağışıklığı baskılanmış konakçılarda, nitazoksanid önemli ölçüde azalmış etkinlik gösterir. Yanıt oranlarının %40’ın altına düştüğü klinik çalışmalarda kanıtlandığı üzere, 60 güne varan uzun süreli kürlerde veya daha yüksek dozlarda bile genellikle parazitolojik temizlenme sağlanamaz.[120][123] Bu popülasyonlardaki başarı, doğrudan antiparaziter etkiden ziyade bağışıklığın yeniden yapılandırılmasıyla (HIV hastalarında antiretroviral tedavi yoluyla) ilişkilidir; bu da nitazoksanidin parazisidal (öldürücü) olmaktan ziyade parazitostatik (durdurucu) doğasını vurgulamaktadır.[124] Oral bir aminoglikozid antibiyotik olan paromomisin gibi alternatif ajanlar, bazı çalışmalarda ookist atılımını %90’a kadar azalttığı için araştırılmıştır, ancak zayıf emilimin sistemik etkileri sınırlaması ve sık görülen gastrointestinal yan etkiler nedeniyle klinik semptom iyileşmesi tutarsızdır.[93] Bir makrolid olan Azitromisin, kombinasyon rejimlerinde yardımcı aktivite gösterir ancak monoterapi denemeleri önemli bir parazitolojik veya klinik fayda bildirmediğinden tek başına etkinliği yoktur.[125][126]

Mevcut farmakolojik seçeneklerin temel sınırlamaları arasında güvenilir bir şekilde tedavi edici bir ajanın bulunmaması, apikompleksan biyolojileri ve birçok ilaca geçirgen olmayan kalın ookist duvarları nedeniyle Cryptosporidium türlerindeki doğal direnç mekanizmaları ve temizlenme için konakçı bağışıklık faktörlerine bağımlılık yer almaktadır.[121] 2025 itibarıyla hiçbir aşı veya yeni FDA onaylı tedavi mevcut değildir; klofazimin veya halofuginon gibi deneysel bileşikler veteriner kullanımı veya klinik öncesi aşamalarla sınırlıdır ve savunmasız popülasyonlardaki yüksek karşılanmamış ihtiyaca rağmen ilaç keşif hatlarındaki boşlukların altını çizmektedir.[127][128] Şiddetli bağışıklık baskılanması olan hastalarda tedavi başarısızlıkları; kronik enfeksiyona, dehidrasyona ve antiretroviral tedavi öncesi dönemde %50’yi aşan ölüm oranlarına yol açabilir.[95]

Destekleyici Bakım ve Konakçı Faktörleri

Destekleyici bakım, kriptosporidiyoz yönetiminin temel taşını oluşturur. Şiddetli durumlarda günde 10 litreyi aşabilen bol ishalden kaynaklanan önemli sıvı kayıplarını ele almak için rehidrasyon (sıvı takviyesi) ve elektrolit değişimini vurgular. Oral rehidrasyon solüsyonları (ORS), çoğu immünokompetan hastada hafif ila orta dereceli dehidrasyon için yeterliyken; derin dehidrasyon veya oral alımın başarısız olduğu durumlarda intravenöz (damar içi) sıvılar endikedir.[91]

Loperamid veya afyon tentürü (tincture of opium) dâhil olmak üzere ishal önleyici ilaçlar aşırı dışkı çıkışını hafifletebilir; afyon tentürü, AIDS ile ilişkili enfeksiyonlar gibi bazı bağışıklığı baskılanmış vakalarda üstün etkinlik göstermektedir. Beslenmenin sürdürülmesi kritik öneme sahiptir; iyileşmeyi desteklemek ve daha fazla morbiditeyi önlemek için bebeklerde emzirmeye devam edilmesi önerilmektedir.[91][120]

Konakçı bağışıklık yetkinliği enfeksiyon sonuçlarını derinden etkiler. İmmünokompetan bireyler tipik olarak düşük dereceli ateş ve karın krampları gibi semptomlarla birlikte 2 ila 3 hafta içinde düzelen, kendi kendini sınırlayan ishal yaşarlar. Buna karşılık, ileri evre HIV, organ nakli veya birincil immün yetmezlikleri olan bağışıklığı baskılanmış hastalar; kolerik ishal, biliyer tutulum ve erimeye yol açan yaşamı tehdit eden malabsorpsiyon dâhil olmak üzere uzun süreli, şiddetli belirtilerle karşı karşıya kalırlar.[2][129]

Küresel Hastalık Yükü 2021 tahminlerine göre Cryptosporidium‘u bu grupta dördüncü önde gelen ishal kaynaklı ölüm nedeni olarak sıralayan beş yaş altı pediatrik yaş, savunmasızlığı artırır. Yetersiz beslenme, bozulmuş mukozal bariyerler ve bağışıklık tepkileri yoluyla şiddeti artırır. Bağırsak mikrobiyota bileşimi konakçı direncini daha da modüle eder; çeşitli profiller, indol gibi metabolit üretimi yoluyla azalan parazit yükü ile ilişkilidir.[129]

Önleme ve Kontrol

Su Arıtma ve Filtrasyon Teknolojileri

Cryptosporidium ookistleri, içme suyu arıtımında tipik olarak kullanılan konsantrasyonlarda serbest klor ve kloramine karşı yüksek direnç gösterir. Bu durum, yalnızca kimyasal dezenfeksiyona güvenmek yerine filtrasyon yoluyla fiziksel olarak uzaklaştırmayı ve alternatif inaktivasyon yöntemlerini zorunlu kılar.[130][131] Bu direnç, ookistlerin klor gibi oksidanların nüfuz etmesini sınırlayan kalın duvarlı yapısından kaynaklanır ve etkili inaktivasyon için pratik seviyelerin çok üzerinde temas süreleri ve dozlar gerektirir.[132] Sonuç olarak, su arıtma süreçleri, iyi işletilen sistemlerde ookistlerin en az 2-log (%99) giderimini sağlamak için filtrasyona öncelik veren ve kimyasal reaktiviteye bağlı kalmadan enfektiviteyi hedefleyen ultraviyole (UV) ışık veya ozon gibi dezenfektanlarla desteklenen çok bariyerli bir yaklaşım kullanır.[4]

Filtrasyon teknolojileri birincil savunmayı oluşturur. Pıhtılaşma (koagülasyon), yumaklaştırma (flokülasyon), çökeltme (sedimantasyon) ve hızlı kum filtrasyonunu içeren geleneksel süreçler, partikül agregasyonu ve boyut dışlama yoluyla ookistleri giderebilir, ancak etkinlik kaynak suyunun bulanıklığına ve operasyonel optimizasyona göre değişir.[133] Çözünmüş hava flotasyonu (DAF) gibi geliştirilmiş yöntemler, pilot çalışmalarda daha yüksek log düşüşleri elde ederek floklara bağlı ookistlerin yüzdürülmesine yardımcı olur ve giderimi iyileştirir. Mikrofiltrasyon (MF) ve ultrafiltrasyon (UF) dâhil olmak üzere membran bazlı filtrasyon, ookist boyutlarını (4–6 µm) aşan gözenek boyutları (MF için 0,1–10 µm, UF için daha küçük) sayesinde üstün fiziksel bariyerler sağlar ve doğrulanmış koşullar altında rutin olarak 4–6 log giderim sunar.[134] ABD Çevre Koruma Ajansı’nın (EPA) 2006 yılında uygulanan Uzun Vadeli 2 Geliştirilmiş Yüzey Suyu Arıtma Kuralı (LT2ESWTR), yüksek Cryptosporidium riskine sahip sistemler için bu tür teknolojileri zorunlu kılar ve vekil (surrogate) izleme ve meydan okuma testleri (challenge testing) yoluyla uyumluluğu doğrular.[135]

İnaktivasyon için UV ışınlaması, hayvan modelleriyle yapılan enfektivite testlerinde gösterildiği gibi düşük dozlarda (örneğin 10–20 mJ/cm²) 3-log’un üzerinde azalma sağlayarak ookist DNA’sını bozar ve bu da onu ookist duvar kalınlığı ile atlatılamayan tercih edilen bir kimyasal olmayan seçenek haline getirir.[136] Güçlü bir oksidan olan ozon, ookistlere klor’dan daha etkili bir şekilde nüfuz eder ve 0,5–2 mg·dak/L CT değerlerinde (konsantrasyon × zaman) 2–3 log inaktivasyon gösterir, ancak yan ürün oluşumu ve kontaktör tasarımı tek başına kullanımını sınırlar.[137] Klor dioksit, 2-log inaktivasyon için yaklaşık 20–40 mg·dak/L CT değerleri gerektirerek serbest klora göre mütevazı bir iyileşme sunar, ancak düzenleyici ve operasyonel karmaşıklıklar nedeniyle daha az benimsenmiştir.[130] Filtrasyonu takiben UV gibi kombine süreçler, daha yüksek kontaminasyon risklerini sınıflandıran LT2ESWTR gibi çerçeveler altında gerekli kılındığı üzere, genel log kredilerini sinerjik olarak artırır.[138] Bu teknolojiler, partikül sayımları veya Giardia kistleri gibi vekil göstergelere karşı doğrulandığında sağlam bir kontrol sağlar, ancak devam eden izleme, su havzası olaylarından veya arıtma kaçaklarından kaynaklanan değişkenliği ele alır.[115]

Halk Sağlığı Politikaları ve Tarımsal Kontroller

Cryptosporidium kontrolü için halk sağlığı politikaları, öncelikle insan enfeksiyonlarının baskın yolu olan su kaynaklı bulaşmayı azaltmak için su kalitesi düzenlemelerini ve gözetimi vurgular. ABD Çevre Koruma Ajansı’nın (EPA) 2006 yılında yayımlanan Uzun Vadeli 2 Geliştirilmiş Yüzey Suyu Arıtma Kuralı (LT2ESWTR), 10.000’den fazla kişiye hizmet veren filtrelenmiş kamu su sistemlerinde kaynak suyunun Cryptosporidium için aylık olarak izlenmesini zorunlu kılar. Kontaminasyon riskine göre yapılan sınıflandırmalarla (bin classification), ookistlerin en az %99 oranında giderilmesini veya inaktive edilmesini sağlamak için arıtma ayarlamaları gerektirir.[139][140] Filtresiz sistemler, kontaminasyonu önlemek için potansiyel bir kaynak olarak tarımsal akış değerlendirmeleri de dâhil olmak üzere su havzası kontrolleri uygulamalıdır.[4] Hastalık Kontrol ve Önleme Merkezleri (CDC), eyalet sağlık departmanlarının su veya gıdayla bağlantılı salgınları bildirmesini zorunlu kılarak hızlı müdahale ve epidemiyolojik soruşturmayı kolaylaştırır.[141]

Çocuk bakım tesisleri ve kamplar gibi ortamlarda, CDC kılavuzları hijyen protokollerini önerir; örneğin, semptomatik bireylerin ishal düzelene kadar (uzamış ookist atılımı nedeniyle semptom başlangıcından sonraki tipik olarak 2 hafta) dışlanması ve rekreasyonel bulaşmayı engellemek için kontamine su oyunlarının yasaklanması gibi.[142][143] Bu politikalar, Cryptosporidium‘un klor direncini tanıyan salgınlardan elde edilen ampirik kanıtlara öncelik verir ve bu da tek başına dezenfeksiyon yerine fiziksel filtrasyonu zorunlu kılar.[4]

Tarımsal kontroller, dışkı akışı yoluyla çevresel kontaminasyonu azaltmak için çiftlik hayvanı rezervuarlarını, özellikle ookist dökülmesinin zirve yaptığı dönemlerde prevalansın %50’yi aşabildiği buzağıları hedefler. En iyi yönetim uygulamaları, doğrudan erişimi sınırlamak için çiftlik hayvanlarının akarsulardan ve su yollarından uzaklaştırılmasını ve ookistlerin su yollarına transferini yavaşlatan bitki örtülü nehir kıyısı (riparian) tampon şeritlerini içerir.[144] Yağmur suyu akışını önlemek için zamanında depolama ve uygulama gibi gübre yönetimi stratejileri, bulaşma döngülerini kesmek için teşvik edilir; ancak saha koşullarında sınırlı etkinlik nedeniyle rutin çiftlik kullanımı için federal olarak zorunlu kılınmış aşılar veya farmasötikler mevcut değildir.[101] Süt işletmelerinde, yenidoğanları yetişkinlerden ayırmak ve buzağılama hijyenini artırmak (ağılları amonyak bazlı çözeltiler gibi etkili ajanlarla dezenfekte etmek), kontrollü çalışmalarda çiftlik düzeyindeki prevalansı %40’a kadar azaltabilir.[145] Bu önlemler, EPA kuralları kapsamındaki su havzası korumasıyla uyumludur ancak gönüllü benimsemeye dayanır; çünkü düzenleyici uygulama yetki alanına göre değişir ve yukarı havzadaki çiftliklerden ziyade aşağı havzadaki su hizmetlerine odaklanır.[4]

Düzenleme ve Uyumluluktaki Zorluklar

İçme suyunda Cryptosporidium‘un düzenlenmesi, temel olarak ABD Çevre Koruma Ajansı’nın (EPA) Yüzey Suyu Arıtma Kuralları kapsamına girer. Buna, 2006’da yayımlanan ve kaynak suyunda ookist izlemeyi ve risk eşiklerini aşan sistemler için ek arıtmayı zorunlu kılan Uzun Vadeli 2 Geliştirilmiş Yüzey Suyu Arıtma Kuralı (LT2ESWTR) dâhildir.[146] Bu kurallar, ookistlerin geleneksel arıtımda kullanılan klor bazlı yöntemlere yüksek direnç göstermesi nedeniyle, kamu su sistemlerinin genellikle filtrasyon iyileştirmeleri veya ultraviyole dezenfeksiyon yoluyla Cryptosporidium‘un en az 2 ila 3-log giderimini veya inaktivasyonunu sağlamasını gerektirir.[4] Uyumluluk zorlukları, parazitin çevresel kalıcılığından ve tespit zorluklarından kaynaklanmaktadır. İzleme, emek yoğun EPA Yöntemleri 1622 veya 1623’e dayanır; bu yöntemler filtrasyon ve immünofloresan içerir ancak canlı ve canlı olmayan ookistleri ayırt etmekte zorlanır, bu da eksik risk değerlendirmelerine yol açar.[147]

10.000’den az kişiye hizmet veren küçük su sistemleri, gelişmiş filtrasyon veya UV sistemlerini uygulamak için sınırlı mali ve teknik kaynaklar dâhil olmak üzere orantısız engellerle karşılaşmaktadır; 2019 itibarıyla 1.000 kişinin altındaki sistemler için dezenfeksiyon benimseme oranları yaklaşık %49 gibi düşük bir seviyede kalmıştır.[147] 2012–2019 arasındaki ham su numunelerinin %0,3’ünden azı ölçülebilir Cryptosporidium konsantrasyonları sağladığından, veri boşlukları sorunları şiddetlendirmekte, doğru sınıflandırma atamalarını ve uygulamayı engellemektedir.[147] 400.000’den fazla insanı etkileyen 1993 Milwaukee olayı gibi tarihsel salgınlar, 2-log giderim gerektiren ancak su havzası kontaminasyonundan kaynaklanan yüksek ookist yüklemesi sırasında başarısız olan Geçici Geliştirilmiş Yüzey Suyu Arıtma Kuralı gibi önceki kurallar altında bile arıtma eksikliklerinin altını çizmektedir.[4]

Tarımsal bağlamda, gübre yönetimi ve akış azaltma gibi noktasal olmayan kaynak kirliliği üzerindeki kontrollere uyum, hayvancılık operasyonlarının dağınık doğası nedeniyle zordur. Özellikle genç buzağıların yağış ve sürü faktörlerinden etkilenen yüksek ookist yükleri saçtığı süt çiftliklerinde bu durum belirgindir.[148] Düzenlemeler genellikle bitki örtülü tampon şeritler gibi gönüllü en iyi yönetim uygulamalarını vurgular; bunlar fırtına akışındaki ookist yüklerini önemli marjlarla azaltabilir ancak uygulama yetki alanına göre değişir ve çiftçi bağlılığı tutarsızdır, bu da bulaşma riskleri konusundaki bilgi boşluklarıyla birleşir.[149] Kontamine gübre uygulamak veya arıtılmamış atık su ile sulama yapmak gibi uygulamalar, akış aşağısındaki su kontaminasyonunu artırır, ancak düzenleyici çerçeveler, aralıklı zirvelerin arıtma sistemlerini bunaltmasına izin veren ölçekler arası niceleme ve azaltma için tek tip standartlardan yoksundur.[150] Genel olarak, bu zorluklar kuralcı kurallar ile pratik uygulama arasındaki gerilimleri vurgulamakta, küçük işletmeler ve değişken çevresel girdiler tutarlı kontrolü zayıflatmaktadır.[147]

Tarihsel Gelişim

Keşif ve İlk Karakterizasyon

Ernest Edward Tyzzer, Cryptosporidium‘u ilk kez 1907’de laboratuvar farelerinin (Mus musculus) mide bezlerinden alınan histolojik kesitleri incelerken gözlemlemiş ve epitel hücrelerine yapışık küçük protozoan formları not etmiştir.[151] Bu parazitler, besin alımını kolaylaştıran bir bağlanma organı aracılığıyla konakçı hücre yüzeyine yapışan, hücre içi ancak sitoplazma dışı konumlarıyla karakterize edilmiştir.[151] Tyzzer, ookistleri 2–5 µm çapında, sporokistlerden yoksun ve konakçı hücrelere bağlıyken sporlanabilen yapılar olarak tanımlamıştır.[151]

1910’da Tyzzer, Cryptosporidium cinsini resmen kurmuş ve gastrik paraziti C. muris olarak adlandırmıştır.[151] İki yıl sonra, 1912’de, aynı fare konakçısının ince bağırsağının epitel hücrelerinde ikinci bir tür olan C. parvum‘u tanımlamıştır.[151] İlk çalışmalar Cryptosporidium‘u koksidiya (coccidia) içine yerleştirmiş, mikroskopi yoluyla gözlemlenen merontlar ve gamontlar dâhil olmak üzere benzersiz bağlanma mekanizmasını ve yaşam döngüsü evrelerini vurgulamıştır.[151]

Keşfini takip eden on yıllar boyunca, Cryptosporidium, çeşitli omurgalı konakçılarda sporadik raporlar olmasına rağmen hastalıkla kurulu bir ilişkisi olmayan, hayvanlarda tesadüfi, patojenik olmayan bir bulgu olarak kabul edildi.[3] İlk karakterizasyon, 1970’lerden önce bulaşma veya klinik önemi konusundaki sınırlı anlayışı yansıtarak patojeniteden ziyade morfoloji ve taksonomisine odaklandı.[3]

Kilit Olaylarla Anlayışın Evrimi

İnsan enfeksiyonu ilk kez 1976’da ishali olan immünokompetan bir çocukta belgelendi ve başlangıçta tesadüfi bir bulgu olarak göz ardı edildi. Ancak 1982’ye gelindiğinde, özellikle AIDS’li bağışıklığı baskılanmış hastalardaki sonraki vakalar, şiddetli ve kronik gastroenteritin bir nedeni olarak rolünü ortaya koydu.[152][151] 1981’de, modifiye edilmiş Ziehl-Neelsen asit-fast boyamanın geliştirilmesi, dışkı örneklerinde ookistlerin güvenilir mikroskobik tespitini sağladı. Bu da tanıyı kolaylaştırdı ve Cryptosporidium‘un, yaşamı tehdit eden dehidrasyon ve malabsorpsiyona neden olduğu HIV/AIDS hastalarında fırsatçı bir patojen olduğunu doğruladı.[153]

Parazitin halk sağlığı açısından önemi su kaynaklı salgınlarla tırmandı: 1984’te Teksas, Braun Station’da 2.000’den fazla vaka kontamine içme suyuna bağlandı ve standart klorlamaya karşı direnci gösterildi.[4] 1987’de Carrollton, Georgia’da bir belediye su kaynağından kaynaklanan bir salgın 13.000 sakini etkileyerek filtrasyon başarısızlıklarının altını çizdi.[151] 400.000’den fazla insanı enfekte eden ve öncelikle bağışıklığı baskılanmış bireyler arasında 69 ölüme neden olan 1993 Milwaukee salgını, C. parvum‘u klora dirençli bir kirletici olarak vurguladı. Bu olay, ABD EPA’nın Yüzey Suyu Arıtma Kuralı geliştirmeleri ve mikrofiltrasyon ile UV dezenfeksiyonunun yaygın olarak benimsenmesi gibi düzenleyici reformları teşvik etti.[2][151]

1990’lara gelindiğinde moleküler çalışmalar, merogoni ve gametogonisi bir parazitofor vakuol içinde gerçekleşen Cryptosporidium‘un geleneksel koksidiyaların dışındaki benzersiz taksonomisini ortaya çıkardı ve zoonotik C. parvum ile insana özgü C. hominis dâhil olmak üzere çoklu genotipler tanımladı.[152] 2000’li yıllardaki küresel gözetim, apikoplast eksikliği ve birçok antiparazitere direnci nedeniyle etkili kemoterapi zor olsa da, onu dünya çapında, özellikle çocuklar ve çiftlik hayvanlarında ishalin önde gelen protozoan nedeni olarak belirledi ve ookist atılım dinamikleri ile konakçı bağışıklığı araştırmalarını yönlendirdi.[151]

Araştırma Sınırları

Genomik ve Konakçı-Patojen Etkileşimlerindeki İlerlemeler

İnsan kriptosporidiyozuna neden olan önemli bir tür olan Cryptosporidium parvum‘un genomu ilk olarak 2004 yılında sekanslanmıştır, ancak uzun okumalı sekanslama teknolojilerindeki son gelişmeler, önceki boşlukları ve tekrarlayan bölgeleri çözen telomerden telomere (T2T) montajları mümkün kılmıştır. Haziran 2025’te, C. parvum IOWA II (CpBGF olarak adlandırılır) için boşluksuz bir hibrit T2T genom montajı yayımlandı. Bu montaj sekiz kromozomu ortaya çıkardı ve eski gen tanımlayıcılarıyla uyumlu yüksek çözünürlüklü notasyonlar sağladı; bu da karşılaştırmalı genomiği ve patojenite ile ilişkili yapısal varyantların tanımlanmasını kolaylaştırdı.[154] Benzer şekilde, Bangladeş izolatlarından elde edilen C. parvum BGD1 gibi diğer türler için kromozom düzeyindeki montajlar, konakçı adaptasyonu ve zoonotik bulaşma ile bağlantılı genomik heterojenliği vurgulamış; tüm genom yeniden sekanslaması, virülansı etkileyen tek nükleotid polimorfizmlerini ortaya çıkarmıştır.[155][156]

Genetik manipülasyon araçları önemli ölçüde ilerleyerek fonksiyonel genomik çalışmalarına olanak sağlamıştır. 2020’den bu yana yinelemeli olarak geliştirilen CRISPR-Cas9 tabanlı sistemler, Cryptosporidium‘da hedeflenen nakavtlara (gen silme) ve taramalara izin vererek eksistasyon, istila ve replikasyon için gerekli parazit genlerini tanımlamıştır.[157] Suşlar arasındaki genetik çaprazlamalar, fare modellerinde ookist üretimi ve konakçı enfektivitesini etkileyenler gibi virülans farklılıklarından sorumlu genomik lokusları tam olarak belirlemiş ve GP60 (konakçı hücre yapışmasında yer alan bir glikoprotein) gibi genlerdeki spesifik alellerin bulaşma potansiyelini artırdığını göstermiştir.[158] Tek hücreli RNA sekanslaması ve transkriptomik analizler, parazitin eşeysiz ve eşeyli evrelerini düzenleyen polisistronik mRNA ekspresyonunu ve antisens transkriptler dâhil kodlamayan RNA’ları (ncRNA) ortaya çıkarmıştır.

Bu genomik içgörüler, Cryptosporidium‘un epitel hücreleri içindeki hücre içi ancak ekstrasitoplazmik nişini vurgulayarak konakçı-patojen etkileşimlerini aydınlatmıştır. Konakçı hücrelerdeki dizili genom çapında CRISPR taramaları, parazitin hayatta kalması için kolesterol biyosentez yollarındakiler gibi temel insan genlerini tanımlamıştır; zira Cryptosporidium sterol sentezleyemez ve bunları konakçıdan temizler, bu da terapötik hedefleme için güvenlik açıkları yaratır. Proteomik ve transkriptomik çalışmalar, parazitin konakçı hücre bağlantılarını yeniden şekillendirmek ve bağışıklıktan kaçmak için apikal kompleksin ötesinde çok sayıda salgı organeli kullandığını; yoğun granüllerden gelenler gibi efektörlerin bağlanma için sıkı bağlantıları (tight junctions) modüle ettiğini göstermektedir. Cryptosporidium içindeki endojen krispovirüsler (cryspoviruses), konakçı gen ekspresyonunu ve bağışıklığını değiştirerek etkileşimleri daha da etkiler ve potansiyel olarak bağışıklığı baskılanmış konakçılarda gözlemlenen kronik inflamasyona katkıda bulunur.[159] Küresel izolatlardaki popülasyon genomiği, C. parvum IIaA alt tiplerinde olduğu gibi, zoonotik yayılma ve insan hastalığı şiddeti ile ilişkili alt tipe özgü adaptasyonları ortaya koymakta ve bulaşma dinamiklerinde genotip-fenotip bağlantılarının altını çizmektedir.[160]

Aşı ve İlaç Geliştirme Çalışmaları

Nitazoksanid, 1 yaş ve üzeri immünokompetan çocuklarda kriptosporidiyoz tedavisi için ABD Gıda ve İlaç Dairesi tarafından onaylanan tek ilaç olmaya devam etmektedir. 3 gün boyunca günde iki kez 500 mg olarak uygulansa da etkinliği mütevazıdır; klinik çalışmalarda parazit yükünü yaklaşık %50-70 oranında azaltırken, şiddetli bağışıklık yetmezliği olan hastalarda semptomları tutarlı bir şekilde çözmez.[124][128] Düşük CD4 sayımına sahip HIV/AIDS hastalarında nitazoksanid ihmal edilebilir antiparaziter aktivite gösterir; bu da Cryptosporidium’un uzun süreli, yaşamı tehdit eden ishale neden olduğu savunmasız popülasyonlar için güvenilir tedavilerin yokluğunu vurgular.[120] Hidrasyon ve beslenme desteği dâhil olmak üzere destekleyici bakım birincil yönetim stratejisini oluşturur; çünkü paromomisin veya azitromisin gibi diğer antiparazitler parazitin tutarlı bir şekilde temizlenmesini sağlamaz.[123]

İlaç keşif çabaları, parazitin hücre dışı ookist evresi ve hücre içi gelişimsel formlarından kaynaklanan birçok standart antiprotozoala karşı direnci nedeniyle, konakçı kolesterol alımına bağımlılığı ve apikompleksana özgü metabolik yollar gibi Cryptosporidium‘un benzersiz biyolojisini hedeflemektedir.[161] Yeniden amaçlandırılan bileşikler klinik öncesi modellerde umut vaat etmektedir; örneğin, terk edilmiş kolesterol sentez inhibitörü lapakistat asetat, lipit temizlemeyi bozarak Cryptosporidium büyümesini in vitro olarak inhibe eder ve Temmuz 2025 itibarıyla hücre testlerinde sığır izolatlarına karşı etkinlik kanıtı sunmuştur.[162] İmatinib gibi tirozin kinaz inhibitörleri, insan bağırsak organoidlerinde sporozoitlere ve merontlara karşı güçlü aktivite sergiler ve mikromolar konsantrasyonlarda enfeksiyonu %90’ın üzerinde azaltır, ancak konakçı toksisitesi endişeleri nedeniyle klinik çeviri beklemededir.[163] Ağustos 2025 çalışmalarında bildirildiği üzere, nitrojen içeren bifosfonatlar, parazit izoprenoid biyosentezini hedefleyerek tek dozlarla enfeksiyonları temizleyerek fare modellerinde etkinlik göstermiştir.[164] 2025’teki hedeflenen CRISPR taramaları, glikosilfosfatidilinositol çapa sentezindekiler gibi temel genleri tanımlamış ve yeni inhibitörler için yüksek verimli taramayı bilgilendirmiştir.[157]

Mukozal IgA ve T hücresi tepkilerini indükleyerek neonatal fare ve buzağı modellerinde kısmi koruma sağlayan Cp23, Cpa135 ve P2 peptidi gibi immünojenik antijenlerin tanımlanmasına rağmen, 2025 itibarıyla insan kullanımı için onaylanmış bir Cryptosporidium aşısı yoktur.[165][166] Çoklu sporozoit antijenlerini hedefleyen sığırlar için bir alt birim formülasyonu da dâhil olmak üzere veteriner aşıları, saha koşullarında ookist çıkışını azaltmada %40-60 etkinlik göstererek çiftlik atılımını azaltmak için son yıllarda onay almıştır.[123] İnsan aşısı geliştirme süreci; parazitin karmaşık yaşam döngüsü, doğal enfeksiyonlarda steril bağışıklığın olmaması ve sistemik antikorlar ile bağırsak koruması arasındaki zayıf korelasyon gibi engellerle karşılaşmaktadır. Tersine (reverse) aşı bilimi yaklaşımları, buzağıları koruyan ancak insanlara uyarlanamayan adaylar vermiştir.[167][168] Parazit enzimlerini hedeflemek için Ekim 2025’te verilen 3,9 milyon dolarlık NIH hibesi gibi son girişimler, bu engelleri aşmak için devam eden genomik odaklı çabaların altını çizmektedir.[169] Koruma korelasyonlarını tanımlamadaki zorluklar devam etmektedir; maruz kalan çocuklardaki antikor yanıtları yeniden enfeksiyonun azalmasıyla ilişkilidir ancak tam koruma sağlamaz.[170]

Referanslar

  1. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3368497/
  2. https://www.cdc.gov/dpdx/cryptosporidiosis/index.html
  3. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6945992/
  4. https://www.epa.gov/sites/default/files/2015-10/documents/cryptosporidium-report.pdf
  5. https://my.clevelandclinic.org/health/diseases/21023-cryptosporidiosis
  6. https://emedicine.medscape.com/article/215490-overview
  7. https://www.cdc.gov/mmwr/volumes/73/ss/ss7308a1.htm
  8. https://www.frontiersin.org/journals/parasitology/articles/10.3389/fpara.2024.1448076/full
  9. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5439462/
  10. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10826111/
  11. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC321466/
  12. https://journals.asm.org/doi/10.1128/AEM.66.6.2385-2391.2000
  13. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0020751921002964
  14. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1931312823001051
  15. https://www.cell.com/cell-host-microbe/pdf/S1931-3128%2820%2930508-4.pdf
  16. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC118076/
  17. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1931312820305084
  18. https://parasitesandvectors.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13071-022-05448-8
  19. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC2838015/
  20. https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2024.07.20.604394v1.full-text
  21. https://parasitesandvectors.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13071-025-07068-4
  22. https://parasitesandvectors.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13071-023-06076-6
  23. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9508764/
  24. https://www.nature.com/articles/s41564-019-0539-x
  25. https://link.springer.com/article/10.1007/s12639-022-01510-5
  26. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9215156/
  27. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9015140/
  28. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC1231075/
  29. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8475647/
  30. https://www.pnas.org/doi/10.1073/pnas.0408563102
  31. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC97419/
  32. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3130844/
  33. https://www.molbiolcell.org/doi/10.1091/mbc.E25-06-0306
  34. https://www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.12.07.471643v1.full-text
  35. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11946830/
  36. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC1698413/
  37. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/17005736/
  38. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2667114X25000391
  39. https://actavetscand.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13028-023-00684-z
  40. https://www.cell.com/trends/parasitology/fulltext/S1471-4922%2825%2900095-9
  41. https://www.nature.com/articles/s41467-024-54995-4
  42. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12304688/
  43. https://parasitesandvectors.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13071-018-3263-0
  44. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0020751920300540
  45. https://www.frontiersin.org/journals/veterinary-science/articles/10.3389/fvets.2020.575881/full
  46. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4087255/
  47. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0168160523000016
  48. https://www.researchgate.net/publication/23313815_Evaluation_of_the_Effect_of_Temperature_on_the_Die-Off_Rate_for_Cryptosporidium_parvum_Oocysts_in_Water_Soils_and_Feces
  49. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0362028X25001693
  50. https://stacks.cdc.gov/view/cdc/230122/cdc_230122_DS1.pdf
  51. https://ehs.cornell.edu/research-safety/biosafety-biosecurity/biological-safety-manuals-and-other-documents/bars-other/cryptosporidium-spp
  52. https://journals.asm.org/doi/10.1128/AEM.71.5.2479-2483.2005
  53. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5993756/
  54. https://www.merckvetmanual.com/digestive-system/cryptosporidiosis/cryptosporidiosis-in-animals
  55. https://www.frontiersin.org/journals/veterinary-science/articles/10.3389/fvets.2020.00430/full
  56. https://uniquescientificpublishers.com/wp-content/uploads/2023/zon-v2/249-260.pdf
  57. https://parasitesandvectors.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13071-023-05827-9
  58. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32514837/
  59. https://bmcvetres.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12917-023-03696-z
  60. https://www.undrr.org/understanding-disaster-risk/terminology/hips/bi0111
  61. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2667114X25000718
  62. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9673120/
  63. https://www.nejm.org/doi/full/10.1056/NEJM199407213310304
  64. https://wwwnc.cdc.gov/eid/article/9/4/02-0417_article
  65. https://www.cdc.gov/mmwr/preview/mmwrhtml/00040818.htm
  66. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3966397/
  67. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11241854/
  68. https://www.gov.uk/government/news/water-supply-issues-in-brixham-area
  69. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11261434/
  70. https://www.cdc.gov/mmwr/volumes/68/wr/mm6825a3.htm
  71. https://www.gov.uk/government/publications/cryptosporidium-national-laboratory-data/cryptosporidium-data-2015-to-2024
  72. https://www.cdc.gov/cryptosporidium/causes/index.html
  73. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6014672/
  74. https://globalhealthnow.org/2025-01/most-neglected-ntd-cryptosporidiosis
  75. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9782356/
  76. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S2352352220300220
  77. https://www.cdc.gov/cryptosporidium/publications/2019-nndss-summary-report.html
  78. https://www.hopkinsmedicine.org/health/conditions-and-diseases/cryptosporidiosis
  79. https://wwwnc.cdc.gov/eid/article/3/1/97-0106_article
  80. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10269812/
  81. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7868307/
  82. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0092867425007512
  83. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC11792522/
  84. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK448085/
  85. https://academic.oup.com/jid/article/197/6/916/921143
  86. https://www.frontiersin.org/journals/immunology/articles/10.3389/fimmu.2023.1205468/full
  87. https://www.nature.com/articles/s41467-023-37129-0
  88. https://www.cdc.gov/cryptosporidium/signs-symptoms/index.html
  89. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC118064/
  90. https://dph.georgia.gov/document/document/adescryptosporidiosisqa02pdf/download
  91. https://www.uptodate.com/contents/cryptosporidiosis-treatment-and-prevention
  92. https://publications.aap.org/redbook/book/347/chapter/5751313/Cryptosporidiosis
  93. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2211320721000440
  94. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7650228/
  95. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC2203234/
  96. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7191976/
  97. https://clinicalinfo.hiv.gov/en/guidelines/hiv-clinical-guidelines-adult-and-adolescent-opportunistic-infections/cryptosporidiosis
  98. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/18030213/
  99. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC3680871/
  100. https://veterinaryresearch.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13567-017-0447-0
  101. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9606155/
  102. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5803921/
  103. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7127282/
  104. https://parasitesandvectors.biomedcentral.com/articles/10.1186/s13071-019-3704-4
  105. https://www.cdc.gov/cryptosporidium/hcp/diagnosis-testing/index.html
  106. https://emedicine.medscape.com/article/215490-workup
  107. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8390533/
  108. https://journals.lww.com/tpar/fulltext/2018/08010/laboratory_diagnosis_of_cryptosporidiosis.2.aspx
  109. https://journals.asm.org/doi/10.1128/jcm.00226-08
  110. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7356455/
  111. https://www.thelancet.com/journals/laninf/article/PIIS1473-3099%2820%2930556-9/fulltext
  112. https://journals.asm.org/doi/10.1128/jcm.03458-12
  113. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC104676/
  114. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0304389421016794
  115. https://www.epa.gov/sites/default/files/2015-07/documents/epa-1623.pdf
  116. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC9228427/
  117. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7909830/
  118. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/29350281/
  119. https://www.parasite-journal.org/articles/parasite/full_html/2018/01/parasite170114/parasite170114.html
  120. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC4640180/
  121. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC10820218/
  122. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC6124509/
  123. https://emedicine.medscape.com/article/215490-treatment
  124. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8154424/
  125. https://emedicine.medscape.com/article/215490-medication
  126. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC8473663/
  127. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7611666/
  128. https://www.frontiersin.org/journals/cellular-and-infection-microbiology/articles/10.3389/fcimb.2023.1115522/full
  129. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12271909/
  130. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC92971/
  131. https://journals.plos.org/plosone/article?id=10.1371/journal.pone.0216040
  132. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0043135402000064
  133. https://www.cdc.gov/mmwr/preview/mmwrhtml/00037331.htm
  134. https://p2infohouse.org/ref/40/39357.pdf
  135. https://www.waterboards.ca.gov/drinking_water/certlic/drinkingwater/documents/disinfectionregulations/71FedReg654Jan052006.pdf
  136. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC129916/
  137. https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0043135499001165
  138. https://www.trojantechnologies.com/en/applications/municipal/drinking-water/cryptosporidium-giardia
  139. https://www.federalregister.gov/documents/2006/01/05/06-4/national-primary-drinking-water-regulations-long-term-2-enhanced-surface-water-treatment-rule
  140. https://www.ecfr.gov/current/title-40/chapter-I/subchapter-D/part-141/subpart-W
  141. https://archive.cdc.gov/www_cdc_gov/parasites/crypto/health_professionals/index.html
  142. https://www.cdc.gov/cryptosporidium/prevention/preventing-and-controlling-crypto-childcare-facilities.html
  143. https://www.cdc.gov/cryptosporidium/prevention/preventing-and-controlling-crypto-at-camps.html
  144. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC7106497/
  145. https://ahdb.org.uk/knowledge-library/controlling-cryptosporidiosis-in-dairy-calves
  146. https://www.epa.gov/dwreginfo/long-term-2-enhanced-surface-water-treatment-rule-documents
  147. https://www.epa.gov/system/files/documents/2024-07/final-syr4-microbial-tsd_508compliant_07.22.24.pdf
  148. http://www.marinrcd.org/wp/wp-content/uploads/2014/01/UCCE_Farm-Factors-Assoc-w-Reducing-Cryptosporidium-Loading-in-Storm-Runoff-from-Dairies.pdf
  149. https://acsess.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.2134/jeq2007.0413
  150. https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38242460/
  151. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC2716703/
  152. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2405676616300142
  153. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2405676621000226
  154. https://www.nature.com/articles/s41597-025-05364-3
  155. https://www.nature.com/articles/s41597-024-04150-x
  156. https://academic.oup.com/jid/article/228/9/1292/7313489
  157. https://www.nature.com/articles/s41467-025-63012-1
  158. https://www.nature.com/articles/s42003-024-06885-0
  159. https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2667114X25000457
  160. https://academic.oup.com/mbe/article/39/4/msac056/6550530
  161. https://www.mdpi.com/2075-1729/14/1/80
  162. https://www.ddw-online.com/abandoned-drug-could-treat-a-neglected-parasitic-infection-35774-202507/
  163. https://journals.asm.org/doi/10.1128/spectrum.03874-22
  164. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC12355920/
  165. https://pmc.ncbi.nlm.nih.gov/articles/PMC5874728/
  166. https://journals.asm.org/doi/10.1128/CVI.05197-11
  167. https://www.tandfonline.com/doi/full/10.2217/fmb.09.115
  168. https://bmcvetres.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12917-023-03699-w
  169. https://www.uh.edu/news-events/stories/2025/october/10072025-cuny-parasites-enzymes-nih.php
  170. https://www.jci.org/articles/view/171966
WhatsApp